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简单染色法用途是什么?
最常用的是苏木精和伊红染色法;按照现代的染色理论的观点,染料之所以能够上染纤维,并在纤维织物上具有一定牢度,是因为染料分子与纤维分子之间存在着各种引力的缘故。
.简单染色法:简单染色法是利用单一染料对细菌进行染色的一种方法, 一般用于观察个体形态与细菌排列。由于细菌在中性、碱性或弱酸性环境中带负电荷,所以通常采用一种碱性染料如美蓝、碱性复红、 结晶紫对细菌进行染色。
简单染色法用途是:适用于菌体一般形状和细菌排列的观察。 简单染色流程 : (1)涂片:取一块干净的载玻片,并在其中央滴一小滴生理盐水(或无菌蒸馏水)。
he染色的操作步骤
1、he染色的基本步骤如下:石蜡切片脱蜡至水。依次将切片放入二甲苯Ⅰ10min-二甲苯Ⅱ10min-无水乙醇Ⅰ5min-无水乙醇Ⅱ5min-95%酒精5min-90%酒精5min-80%酒精5min-70%酒精5min-蒸馏水洗。苏木素染细胞核。
2、取组织切片:将要观察的组织切片经过脱水、清洁、包埋等处理后,放置在载玻片上。 焙烧:将载玻片放入烤箱中进行焙烧,使组织切片贴附在玻片上。 脱蜡:将载玻片放入脱蜡剂中,使组织切片中的蜡质溶解。
3、he染色的具体步骤如下:样品固定:95%乙醇固定20min,PBS洗涤2次,每次1min。染核:苏木素染液染色2-3min,自来水洗涤。分色:镜下观察,若细胞核染色过深,用1%盐酸酒精溶液分色数秒,自来水洗涤。
4、具体操作步骤包括: 将组织切片进行脱水处理,去除切片中的水分。 用苏木精染液将组织切片中的嗜碱蛋白质染成深蓝色。 用清水冲洗切片,去除多余染料。 用伊红染液将细胞核和细胞质染成红色。
5、实验步骤 样品制备:对于贴壁生长细胞,胰酶消化,调整细胞浓度约1×105/ml,滴加于盖玻片上(置于6孔板中),培养相应时间后,取出细胞爬片,用PBS洗涤3次。样品固定:95%乙醇固定20min,PBS洗涤2次,每次1min。
给细菌染色的方法都有几种,怎么操作,都用复红染色
(5)用热的Fontana银液覆盖,染色5 min,每隔1 min更换1次染色液( Fontana银液在沸水浴中加热)。细菌涂层的每一部分都始终要浸在染色液中,不能裸露。 (6)用水冲洗,在空气中晾干,镜检。
常用的染色方法有革兰氏染色(最基本)、芽孢染色、荚膜染色、鞭毛染色等。
单染色一般要经过涂片、固定、染色、水洗和干燥五个步骤。染色结果依染料不同而不同:石碳酸复红染色液:着色快,时间短,菌体呈红色。美兰染色液:着色慢,时间长,效果清晰,菌体呈蓝色。
单染色法的基本步骤有哪些?有何注意事项
一般要经过涂片、固定、染色、水洗、干燥五个步骤,其中,最关键的步骤是染色。其他步骤只影响观看时候的清晰程度,而染色步骤决定了成功与否。改进建议:载玻片要清洁无油污,否则菌液不易涂开。
离心去PBS,加入冰预冷的70%的乙醇固定,4℃,1—2小时。 离心弃去固定液,3mlPBS重悬5min。 400目的筛网过滤1次,500—1000r/min离心5min,弃去PBS。 用1ml PI染液染色,4℃避光30min。
(4)分色:镜下观察,若细胞核染色过深,用1%盐酸酒精溶液分色数秒,自来水洗涤。(5)染胞质:浸入伊红染液染色1min,自来水洗涤。(6)吹干或自然晾干细胞 爬片后,中性树胶封片。
首先是要对动物肝脏进行消毒,在消毒之后取一毫米的组织表面,然后滴上无菌甲醛放置三分钟,在使用染色液进行覆盖,擦去染色液之后,用显微镜观察标本并拍照记录即可。
简单染色法是利用单一染料对细菌进行染色的一种方法。操作步骤 1.涂片:用灼烧灭菌冷却后的接种环挑取少量菌体与水滴充分混匀,涂成极薄的菌膜。
(5)干燥:用吸水纸吸去涂片边缘的水珠,置室温下自然干燥或微微加热,以加快干燥速度。注意用吸水纸时切勿将菌体擦掉。(6)镜检:用显微镜观察,并用铅笔绘出细菌形态图。
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